え〜あんだけ１桁違う！！って言ってたのに、
本キャンのPCで開いたら、式の数値変わってて1万〜10万におさまってます(笑)
で、私の思いつく変更箇所＆追加点を載せます。
あと荒川くんのためにレポートのまとめの10問も。
ついでに携帯で撮ったゲルとニトロセルロース膜も（写真は明るいの暗いの２枚ずつ持ってるのでほしい方は連絡を）。
・試薬Dのメタノールは20％ではなく、100％のものを用いた。
・分離ゲルの作製では、アクリルアミドの濃度が12.5％になるように調整し、純水→溶液A→溶液C（アクリルアミド）→溶液D→溶液Eの順で混ぜ合わせた。また濃縮ゲルは純水→溶液B→溶液C（アクリルアミド）→溶液D→溶液Eの順で混ぜ合わせた。
・一次抗体は50倍希釈のものを2000倍希釈してから用いた。
・DABは純水２mlに溶かし、過酸化水素水（H₂O₂）を0.5µl加えてから染色に用いた。
?SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動法（SDS-PAGE）により、タンパク質が分子量によって分離される原理について述べよ。
?SDS-PAGE以外の電気泳動法について調べよ。それらはタンパク質のどのような性質を利用しているか。
?試料タンパク質が難溶性の場合、どうすればいいか。
?スラブ電気泳動法とディスク電気泳動法のそれぞれの長所と短所について述べよ。
?染色液に用いるCBBにはCBB-RとCBB-Gとがあるが、通常Rのほうが好まれる。その理由を述べよ。
?ゲル濃度と分子量の関係について述べよ。
?分子量の近い種類の試料タンパク質をSDS-PAGEで分離するにはどのように工夫すればいいか。
?SDS-PAGEを行う前に試料タンパク質を煮沸するが、それはなぜか。
?誤って電源の（+）と（-）を逆に接続してしまったとしたら、どのような減少が予想されるか。
?タンパク質を分子量で分離する方法にはほかにどのようなものがあるか。
ではでは、レポートはためずに早めにやりましょう〜〜
本キャンのPCで開いたら、式の数値変わってて1万〜10万におさまってます(笑)
で、私の思いつく変更箇所＆追加点を載せます。
あと荒川くんのためにレポートのまとめの10問も。
ついでに携帯で撮ったゲルとニトロセルロース膜も（写真は明るいの暗いの２枚ずつ持ってるのでほしい方は連絡を）。
・試薬Dのメタノールは20％ではなく、100％のものを用いた。
・分離ゲルの作製では、アクリルアミドの濃度が12.5％になるように調整し、純水→溶液A→溶液C（アクリルアミド）→溶液D→溶液Eの順で混ぜ合わせた。また濃縮ゲルは純水→溶液B→溶液C（アクリルアミド）→溶液D→溶液Eの順で混ぜ合わせた。
・一次抗体は50倍希釈のものを2000倍希釈してから用いた。
・DABは純水２mlに溶かし、過酸化水素水（H₂O₂）を0.5µl加えてから染色に用いた。
?SDS-ポリアクリルアミドゲル電気泳動法（SDS-PAGE）により、タンパク質が分子量によって分離される原理について述べよ。
?SDS-PAGE以外の電気泳動法について調べよ。それらはタンパク質のどのような性質を利用しているか。
?試料タンパク質が難溶性の場合、どうすればいいか。
?スラブ電気泳動法とディスク電気泳動法のそれぞれの長所と短所について述べよ。
?染色液に用いるCBBにはCBB-RとCBB-Gとがあるが、通常Rのほうが好まれる。その理由を述べよ。
?ゲル濃度と分子量の関係について述べよ。
?分子量の近い種類の試料タンパク質をSDS-PAGEで分離するにはどのように工夫すればいいか。
?SDS-PAGEを行う前に試料タンパク質を煮沸するが、それはなぜか。
?誤って電源の（+）と（-）を逆に接続してしまったとしたら、どのような減少が予想されるか。
?タンパク質を分子量で分離する方法にはほかにどのようなものがあるか。
ではでは、レポートはためずに早めにやりましょう〜〜
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